ATCC細胞在培養瓶長成致密單層后，已基本上飽和，為使細胞能繼續生長，同時也將細胞數量擴大，就必須進行傳代（再培養）。傳代培養也是一種將細胞種保存下去的方法。同時也是利用培養細胞進行各種實驗的必經過程。懸浮型細胞直接分瓶就可以，而貼壁細胞需經消化后才能分瓶。
ATCC細胞株穩定整合試驗中的幾個關鍵因素：
1)，外源插入片段的拷貝數。多數情況下，低拷貝甚至是單拷貝可以減少人為實驗因素的干擾。
2)，整合的幾率，這不僅決定了穩定株篩選的難易程度，而且還可以幫助人們更容易得到混合穩定株。
3)，整合位點的轉錄活躍度，決定了穩定株中外源片段的表達質量。理想的狀況是單拷貝，但轉錄活性比較高。
4)，整合后的穩定性。不同的整合位點決定了外源片段在染色體中的穩定性，有些區域易發生重組或者丟失，從而導致穩定株再次丟失的情況。
5)，使用混合穩定株或者獲得多個不同單克隆穩定株。因為穩定整合往往伴隨這插入失活宿主內源基因，所以實驗時通過使用混合穩定株，或者對多個單克隆穩定株進行比較，可以幫助研究人員獲得更的實驗數據。
凍存的ATCC細胞株和雜交腐細胞株在運送過程中使用干冰保持低溫。收到細胞后，可以立即解凍復蘇，去除二甲基亞砜（DSMO0）后進行細胞培養。如果不立即復蘇培養細胞，必須將細胞凍存管放置于液氮罐氣相層儲存。請不要將細胞存儲在-130℃以上的溫度。如果溫度不夠低，達不到-130℃，細胞活力會立即下降。
ATCC細胞的培養試劑分析：
一、紡錘體阻斷劑
在有絲分裂過程中，隨著紡錘絲的形成，染色體被牽引到一起難以觀察其形態。紡錘體的形成在于細胞質和紡錘體成分的粘度之間的平衡，因此，改變細胞質的粘度，即可破壞紡錘體形成，從而使得染色體均勻散開，且染色體縊痕區更為清楚。
在培養中使用的紡錘體阻斷劑為秋水仙素，在終止培養前加入適量秋水仙素，使正在分裂的細胞停留在中期，以獲得大量分裂相供分析之用。秋水仙素的濃度范圍比較寬，一般使用濃度0.05-0.8微克/毫升，在終止培養前處理2-4小時。但在實際工作中需要借助濃度和處理時間來控制染色體的收縮程度。秋水仙素作用時間越長，被阻斷的中期分裂相越多，但是染色體也越凝聚和收縮，所以還視各實驗室經驗而定。
二、ATCC細胞低滲液
低滲液是指滲透壓和離子強度均低于正常細胞生理條件的溶液，如水、低滲的檸檬酸鈉或氯化鈉、甘油磷酸鉀（0.65M）、KCl（0.075M）等。低滲效果取決于低滲液的化學組成、低滲的溫度和處理時間。低滲處理是憑借反滲透作用使細胞膨脹染色體鋪展，同時可使粘附于染色體的核仁物質散開，以便能在一個平面上觀察所有染色體形態。實驗室中一般選用0.075MKCl為低滲液（具體情況取決于實際操作，鑒于實驗的連續性和穩定性，本實驗室采用0.35%KCl），其優點有：
1.染色體輪廓清楚，可染色性強，染色時間短。
2.用于顯帶染色時能充分顯示帶型特點。低滲處理為37℃，15-25分鐘，以預實驗條件為準。
三、固定液
固定液的重要特性是能迅速穿透細胞，將其固定并維持染色體結構的完整性，還要能夠增強染色體的嗜堿性，達到優良染色效果。單純的固定液一般難以達到這些要求，因此在實驗中使用兩種混和的固定液。
Carnoy固定液（甲醇:冰乙酸=3:l）每次使用前需臨時配制，長時間放置影響固定效果，固定時間15分鐘至24小時，冰箱、室溫均可。必要時可改變甲醇和冰乙酸的比例，冰乙酸比例增加，利于細胞膨脹、染色體鋪展，但易導致細胞破裂、染色體散失。
四、滴片
滴片使細胞懸液從一定高處落在載玻片上，淋巴母細胞膜破裂，染色體分散開。載玻片可用冰片和干片，效果均好。滴片后需空氣干燥。
五、Giemsa染色
Giemsa染料不是一種單一染料，而是天青、伊紅、甘油和甲醇的混合物，配制后原液儲存。在常規染色中，并不比其他染料*，但在顯帶技術中，卻是*的。
Giemsa工作液在使用前臨時配制，濃度可在2.5-10%之間（原液2份加pH7.4磷酸緩沖液10-40份）。染色后，染色質呈紅色，細胞核是藍色。
